Avaliação de técnicas de coloração no diagnóstico laboratorial da criptosporidiose
DOI:
https://doi.org/10.47456/rbps.v25i3.40457Palavras-chave:
Cryptosporidium spp., Colorações permanentes, Microscopia, Diagnóstico, Controle de qualidadeResumo
Introdução: A criptosporidiose é uma doença diarreica que afeta principalmente crianças e indivíduos imunocomprometidos. Seu diagnóstico laboratorial é baseado em técnicas de coloração permanente e muitos desafios ainda precisam ser vencidos para a sua implementação como rotina de laboratórios clínicos. Objetivos: Comparar a eficácia de diferentes técnicas de coloração permanente na detecção de oocistos de Cryptosporidium spp. em amostras de fezes e avaliar a melhor metodologia a ser implementada em laboratórios clínicos. Métodos: Indivíduos apresentando suspeita clínica de criptosporidiose foram convidados a participar do estudo. Um total de 18 amostras de fezes (com e sem o conservante formol 10%) foram analisadas. Cinco diferentes abordagens foram realizadas: Ziehl-Neelsen (ZN) com e sem aquecimento, Safranina (SF) com e sem aquecimento e Panótico Rápido. Resultados: Das 18 amostras analisadas, sete (38,9%) foram positivas para Cryptosporidium spp. por pelo menos uma das técnicas de coloração utilizadas. A técnica da SF com aquecimento teve o melhor desempenho, apresentando maior percentagem de acertos (77,78%) e menor percentagem de erros (5,56%) quando comparada às outras técnicas de coloração. A concordância estatística foi “leve” (Kappa=0,36, p<0,0001). A qualidade da fixação do esfregaço fecal em lâmina e da coloração mostrou resultados satisfatórios tanto macro quanto microscopicamente. Conclusão: O presente estudo chama a atenção para a frequência de infecção moderada para Cryptosporidium spp. em Juiz de Fora e a necessidade de avaliação das técnicas utilizadas na rotina laboratorial para diagnóstico de coccídeos.
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Referências
Thompson ARC, Koh WH; Clode PL. Cryptosporidium — What is it? Food And Waterborne Parasitol. 2016; 4:54-61.
Gerace E, Lopresti VDM, Biondo C. Cryptosporidium infec¬tion: epidemiology, pathogenesis, and differential diagnosis. Eur J Microbiol Immunol. 2019; 9(4):119-123.
Dumaine JE, Tandel J, Striepen B. Cryptosporidium par¬vum. Trends Parasitol. 2020; 36(5):485-486.
Checkley W, White AC Jr, Jaganath D, et al. A review of the glo¬bal burden, novel diagnostics, therapeutics, and vaccine targets for Cryptosporidium. Lancet Infect Dis. 2015; 15(1):85-94.
Crestia, J, Razakandrainibe R, Costa D, Damiani C, Totet A, Le Govic Y. ‘Seven shades of Cryptosporidium’. Clin Microbiol Infect. 2022; 28(4):548-549.
De Carli GA. Parasitologia Clínica: seleção de métodos e técni¬cas de laboratório para diagnóstico das parasitoses humanas. 1 st ed. São Paulo: Atheneu; 2001.
McHugh ML. Interrater reliability: the kappa statistic. Biochem Med (Zagreb). 2012; 22(3):276-82.
Andrade F, Rode G, Silva Filho HH, Greinert-Goulart JA. Para¬sitoses intestinais em um centro de educação infantil público do município de Blumenau, SC, Brasil, com ênfase em Cryptospori¬dium spp. e outros protozoários. Rev Patol Trop. 2009; 37(4):332-340.
Ferreira ACMS, Santana IM, Romeiro ET, et al. Cryptospori¬dium spp. em população de comunidades, PE- Brasil. Braz J Develop. 2021; 7(8):79316-79330.
Norberg AN, Manhães FC, Matos AA, et al. Coccioses intesti¬nais em crianças menores de quinze anos da Comunidade São Francisco de Assis, Manhuaçu, Minas Gerais, Brasil. Interdisc Sci J. 2019; 6(2):119-129.
Peralta RH, Velásquez JN, Cunha FS, et al. Genetic diversity of Cryptosporidium identified in clinical samples from cities in Brazil and Argentina. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2016; 111(1):30-36.
Al-Shamiri A, Al-Zubairy A, Al-Mamari R. The Prevalence of Cryptosporidium spp. in Children, Taiz District, Yemen. Iran J Parasitol. 2010; 5(2):26-32.
Khan A, Shams S, Khan S, Khan MI, Khan S; Ali A. Evaluation of prevalence and risk factors associated with Cryptosporidium infection in rural population of district Buner, Pakistan. Plos One. 2019; 14(1):1-17.
Tombang AN, Ambe NF, Bobga TP, et al. Prevalence and risk factors associated with cryptosporidiosis among children within the ages 0-5 years attending the Limbe regional hospital, sou¬thwest region, Cameroon. BMC Public Health. 2019; 19(1):1144.
Dong S, Yang Y, Wang Y, et al. Prevalence of Cryptosporidium infection in the global population: a systematic review and meta¬-analysis. Acta Parasitologica. 2020; 65:882–889.
Santos RP, Faria AR. Atualização em coccidioses intestinais: uma abordagem crítica. RBAC. 2019; 51(4):290-5.
Pacheco FT, Silva RK, Martins AS, et al. Differences in the detec¬tion of Cryptosporidium and Isospora (Cystoisospora) oocysts according to the fecal concentration or staining method used in a clinical laboratory. J Parasitol. 2013; 99(6):1002-8.
Carneiro IV, Almeida JL, Santos ALQ. Hemoparasites of red piranha Pygocentrus nattereri (Kner, 1858) (Characiformes: Characidae) captured in red river, middle Araguaia River region, state of Goiás (GO), Brazil. Vet Not. 2016; 22(2):41-50.
Garcia LS, Bruckner DA. Diagnostic Medical Parasitology. 2nd ed.; Washington: ASM Press; 1993.
Harrington BJ. Microscopy of 4 pathogenic enteric protozoan parasites: a review. Lab Med. 2008; 39(4):231–238.
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