Control of phenolic oxidation in the in vitro culture of Astronium urundeuva (M. Allemão) Engl.
DOI:
https://doi.org/10.47456/bjpe.v9i3.40683Palavras-chave:
Aroeira do sertão, Juvenile shoots, AntioxidantResumo
Astronium urundeuva (Aroeira-do-sertão) is a Brazilian native species with silvicultural potential for logging. In the in vitro cultivation of the species, difficulties such as phenolic oxidation have been observed, mainly from explants collected from adult matrix trees. Thus, the explants originating from seeds are an alternative for the propagation of the species to minimize oxidation. In this context, the study aimed to evaluate the action of ascorbic acid, activated charcoal, and polyvinylpyrrolidone in controlling phenolic oxidation in the in vitro culture of A. urundeuva. Apical shoots obtained from seedlings of A. urundeuva germinated in vitro were used as explants. They were cultivated in MS50% culture medium plus ascorbic acid (0.2; 0.4; 0.6, and 0.8 mg.L-1) and activated charcoal (3.0; 6.0; 9.0, and 12 g.L-1) and polyvinylpyrrolidone (0.5; 1.0; 1.5 and 2.0 g.L-1). After in vitro culture, ascorbic acid, activated charcoal, and PVP at concentrations of 0.2 mg.L-1, 12 g.L-1 and 1.5 g.L-1, respectively, were effective in controlling phenolic oxidation. At this concentration, activated charcoal completely regulated the phenolic oxidation of the seedlings. The results of this work demonstrate the feasibility of antioxidants in minimizing the effects of phenolic oxidation, especially with the use of activated charcoal, and open perspectives for further studies of micropropagation of A. urundeuva, both in juvenile and adult genetic materials, contributing to its conservation and assisting in the genetic improvement of the species.
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Referências
Ahmad, I., Hussain, T., Ashraf, I., Nafees, M., Maryam, R. M., & Iqbal, M. (2013). Lethal effects of secondary metabolites on plant tissue culture. Am Eurasian J Agric Environ Sci, 13(4), 539-547. https://doi.org/10.5829/idosi.aejaes.2013.13.04.1975
Alfenas, A. C., Zauza, E. A. V., Mafia, R. G., & De Assis, T. F. (2004). Clonagem e doenças do eucalipto.
Araújo, J. M. (2009). Química de Alimentos: teoria e prática. atual. ampl. Viçosa: UFV.
Azevedo, M. L. D. (2018). Micropropagação e enraizamento de miniestacas de mogno africano (Khaya ivorensis A. Chev). Dissertação (Mestrado) – Programa de Pós-Graduação em Ciência Florestal, Universidade Federal dos Vales do Jequitinhonha e Mucuri, Diamantina.
Bassan, J. S., Reiniger, L. R. S., Rocha, B. H. G., Severo, C. R. P., & Flôres, A. V. (2006). Oxidação fenólica, tipo de explante e meios de cultura no estabelecimento in vitro de canafístula (Peltophorum dubium (Spreng.) Taub.). Ciência Florestal, 16, 381-390. https://doi.org/10.5902/198050981919 DOI: https://doi.org/10.5902/198050981919
Borges, S. R., Xavier, A., Oliveira, L. S. D., Lopes, A. P., Otoni, W. C., Takahashi, E. K., & Melo, L. A. D. (2012). Estabelecimento in vitro de clones híbridos de Eucalyptus globulus. Ciência Florestal, 22, 605-616. https://doi.org/10.5902/198050986626 DOI: https://doi.org/10.5902/198050986626
Brasil. Ministério do Meio Ambiente. Instrução Normativa n°. 006 de 23 de setembro de 2008 Recuperado de http://portal.saude.gov.br/portal/arquivos/pdf/MMA_IN_N_6.pdf.
Cassells, A. C. & Curry, R. F. (2001). Oxidative stress and physiological, epigenetic and genetic variability in plant tissue culture: implications for micropropagators and genetic engineers. Plant cell, tissue and organ culture, 64, 145-157. https://doi.org/10.1023/A:1010692104861 DOI: https://doi.org/10.1023/A:1010692104861
Cid, L. P. B., & Teixeira, J. B. (2014). Explante, meio nutritivo, luz e temperatura. Cultivo in vitro de plantas, 3, 163-176.
Demier, A. D. M. (2018). Doces matas do Norte de Minas: atores, Instituições e a obtenção do registro de indicação geográfica do mel de aroeira. Recuperado de http://hdl.handle.net/1843/NCAP-B58EYN
Erig, A. C. & Schuch, M. W. (2003). Tipo de explante e controle da contaminação e oxidação no estabelecimento in vitro de plantas de macieira (Malus domestica Borkh.) cvs. Galaxy, Maxigala e Mastergala. Revista Brasileira de Agrociência, 9(3), 221-227
Golle, D. P., Reiniger, L. R. S., Curti, A. R., & Benítez León, E. A. (2012). Estabelecimento e desenvolvimento in vitro de Eugenia involucrata DC.: influência do tipo de explante e do meio nutritivo. Ciência Florestal, 22, 207-214. https://doi.org/10.5902/198050985092 DOI: https://doi.org/10.5902/198050985092
Hung, C. D., Hong, C. H., Kim, S. K., Lee, K. H., Park, J. Y., Nam, M. W., ... & Lee, H. I. (2016). LED light for in vitro and ex vitro efficient growth of economically important highbush blueberry (Vaccinium corymbosum L.). Acta Physiologiae Plantarum, 38, 1-9. https://doi.org/10.1007/s11738-016-2164-0 DOI: https://doi.org/10.1007/s11738-016-2164-0
Isah, T. (2016). Induction of somatic embryogenesis in woody plants. Acta Physiologiae Plantarum, 38, 1-22. https://doi.org/10.1007/s11738-016-2134-6 DOI: https://doi.org/10.1007/s11738-016-2134-6
Jardim, L. S., Sampaio, P. D. T. B., Costa, S. D. S., Gonçalves, C. D. Q. B., & Brandão, H. L. M. (2010). Efeito de diferentes reguladores de crescimento na regeneração in vitro de pau-rosa (Aniba rosaeodora Ducke). Acta Amazonica, 40, 275-279. https://doi.org/10.1590/S0044-59672010000200005 DOI: https://doi.org/10.1590/S0044-59672010000200005
Lal, M., Jamwal, M., Bakshi, P., Jasrotia, A. Sharma, N., Sharma, M., Singh, P., Sharma, S., & Kumar, S. (2021). Influence of Antioxidants on in vitro Culture Establishment of Clonal Apple Rootstocks. Biological Forum –an International Journal,13(2): 381-385.
Lameira, O., Lopes, S. D. C., Nogueira, R., & Pinto, J. (2001). Micropropagação de mogno.
Lencina, K. H., Bisognin, D. A., Pimentel, N., Kielse, P., & Mello, U. S. D. (2018). Produtividade de microcepas de grápia (Apuleia leiocarpa) mantidas in vitro. Ciência Florestal, 28, 150-159. https://doi.org/10.5902/1980509831635 DOI: https://doi.org/10.5902/1980509831635
Meneghetti, E. C. (2020). Propagação clonal de Pinus elliottii x Pinus caribaea (Doctoral dissertation, Universidade de São Paulo).
Meneguzzi, A., Konzen, E. R., Navroski, M. C., Camargo, S. S., Pereira, M. D. O., Rufato, L., & Lovatel, Q. C. (2019). Shoot multiplication of two Sequoia sempervirens genotypes with addition of small concentrations of kinetin. Pesquisa florestal brasileira, Colombo. 39, 8. https://doi.org/0.4336/2019.pfb.39e201701550 DOI: https://doi.org/10.4336/2019.pfb.39e201701550
Monteiro, J. M., Albuquerque, U. P., Lins Neto, E. M., Araújo, E. L., Albuquerque, M. M., & Amorim, E. L. (2006). The effects of seasonal climate changes in the Caatinga on tannin levels in Myracrodruon urundeuva (Engl.) Fr. All. and Anadenanthera colubrina (Vell.) Brenan. Revista Brasileira de Farmacognosia, 16, 338-344. https://doi.org/10.1590/S0102-695X2006000300010 DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-695X2006000300010
Murashige, T. C. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant, 15, 473-497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Pacheco, M. V., Matos, V. P., Ferreira, R. L. C., Feliciano, A. L. P., & Pinto, K. M. S. (2006). Efeito de temperaturas e substratos na germinação de sementes de Myracrodruon urundeuva Fr. All.(Anacardiaceae). Revista Árvore, 30, 359-367. https://doi.org/10.1590/S0100-67622006000300006 DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-67622006000300006
Oliveira, B., Moreira, R. M., Ramm, A., da silva, J. B., Maciejewski, P., & Schuch, M. W. (2018). Polivinilpirrolidona no estabelecimento in vitro de oliveira ‘grappolo 541’. Revista da Jornada de Pós-Graduação e Pesquisa-Congrega Urcamp, 1378-1389. Recuperado de http://revista.urcamp.edu.br/index.php/rcjpgp/article/view/2912/2021
Oliveira, G. D. L. (2013). Topoquímica e abordagem sobre a estrutura e a conectividade lignina-fenol-parede celular em Euterpe oleracea Mart.(Arecaceae).
Oliveira, L. S., Dias, P. C., & Brondani, G. E. (2013). Micropropagação de espécies florestais brasileiras. Pesquisa florestal brasileira, 33(76), 439-453.https://doi.org/10.4336/2013.pfb.33.76.481 DOI: https://doi.org/10.4336/2013.pfb.33.76.481
RStudio Team (2020). RStudio: Integrated Development for R. RStudio, PBC, Boston, MA Recuperado de http://www.rstudio.com/
Schuch, M. W., Damiani, C. R., Silva, L. C. D., & Erig, A. C. (2008). Micropropagação como técnica de rejuvenescimento em mirtilo (Vaccinium ashei Reade) cultivar Climax. Ciência e Agrotecnologia, 32, 814-820. Recuperado de https://www.scielo.br/j/cagro/a/JTHWNRpMyfBmJ9YtgrGgSyh/?lang=pt DOI: https://doi.org/10.1590/S1413-70542008000300017
Silva-Luz, C. L. & Pirani, J. R. (2010). Anacardiaceae in lista de espécies da flora do Brasil. Rio de Janeiro: Jardim Botânico do Rio de Janeiro. Recuperado de http://floradobrasil.jbrj.gov.br/jabot/floradobrasil/ FB4394.
Silva, K. B., Reiniger, L. R. S., Rabaiolli , S. M. S, da Fonseca Ziegler, A. C., & Stefanel, C. M. (2021). Efeito de diferentes períodos de cultivo na micropropagação de brotações de Luehea divaricata. Pesquisa Florestal Brasileira, 41. DOI: https://doi.org/10.4336/2021.pfb.41e201901921
Taiz, L. & Zeiger, E. (2004). Fisiologia vegetal. Porto Alegre: Artmed. 719p. https://doi.org/110.4336/2021.pfb.41e201901921
Taiz, L. & Zeiger, E. (2004). Fisiologia vegetal. 3.ed. Porto Alegre: Artmed.
Verde, D. D. S. V., de Souza Mendes, M. I., da Silva Souza, A., Pinto, C. R., Nobre, L. V. C., dos Santos Melo, J. E., & da Silva Ledo, C. A. (2021). Ácido ascórbico e polivinilpirrolidona no cultivo in vitro de Dioscorea spp. Research, Society and Development, 10(9), e10510917812-e10510917812. Recuperado de https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/17812. DOI: https://doi.org/10.33448/rsd-v10i9.17812
Vieira, R. F., Camillo, J., Coradin, L., & Vieira, R. F. (2018). Espécies nativas da flora brasileira de valor econômico atual ou potencial: plantas para o futuro: Região Centro-Oeste. Brasília, DF: MMA, 2018. Recuperado de https://www.alice.cnptia.embrapa.br/handle/doc/1073295
Vizzotto, M., Krolow, A. C. R., & Weber, G. E. B. (2010). Metabólitos secundários encontrados em plantas e sua importância. Recuperado de https://www.infoteca.cnptia.embrapa.br/bitstream/doc/886074/1/documento316.pdf
Xavier, A., Wendling, I. V. A. R., & Silva, R. L. (2009). Silvicultura clonal: princípios e técnicas Viçosa. MG: Universidade Federal de Viçosa.
Xavier, A., Wendling, I., & Silva, R. L. (2013). Silvicultra clonal: princípios e técnicas. Viçosa, MG, Ed. UFV, p. 279.
Yoshiko, A. S., & Teixeira, H. C. D. (2001). Micropropagação de Celtis sp: controle da contaminação e oxidação. Cerne, 7(2), 117-123. Recuperado de http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=74470211
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